摘要：杂交瘤细胞融合后进入HAT选择培养，是单克隆抗体制备流程中非常关键的一步，但实验中经常出现集落稀疏、孔内细胞逐渐消失甚至整块板无细胞存活等问题。不同失败表现背后的原因并不相同：融合后24-48小时即出现大量细胞碎片，更需要排查PEG融合、亲本细胞状态和操作损伤；前2_{3天仍有活细胞、到第5}7天集落逐渐消退，则应进一步检查HAT选择压力、HGPRT缺陷是否稳定、培养基质量、铺板密度、饲养层和血清批次等变量。本文按照发生阶段整理杂交瘤HAT筛选中常见的7类问题，并给出对应验证方法和处理思路，帮助实验人员建立更加系统的排查路径。

关键词：杂交瘤、HAT筛选、杂交瘤细胞、集落生长不良、HGPRT缺陷、PEG细胞融合、骨髓瘤细胞、饲养层、单克隆抗体、促杂交瘤生长剂、杂交瘤生长剂

杂交瘤细胞融合后通过HAT培养进行选择，是经典单克隆抗体制备流程中的核心步骤。理论上，成功融合的杂交瘤细胞既继承B细胞相关抗体分泌能力，又获得骨髓瘤细胞持续增殖能力，因此能够在HAT选择环境中逐步形成可见集落。但实际实验往往没有这么顺利，最常见的情况包括融合后大量细胞快速死亡、孔内只有少量零星细胞、前几天还能看到小细胞团但随后逐渐消失，或者最终整板几乎没有可继续扩增的阳性集落。

这类问题很容易被简单归结成“融合失败”或者“HAT太强”，但实际上，杂交瘤筛选结果同时受到亲本细胞状态、PEG操作、骨髓瘤HGPRT表型、培养基、铺板密度、饲养层、血清以及培养箱条件等多个因素影响。如果一次实验中同时修改多个变量，即使下一次结果恢复正常，也很难判断究竟是哪一个环节真正解决了问题。因此，更高效的方法是先根据细胞死亡发生的时间判断问题属于哪个阶段，再针对性设置验证实验。

一、先判断失败发生在哪个阶段：24-48小时死亡和第5-7天消退不是一回事

杂交瘤细胞生长不良大致可以分为两类。第一类是融合后早期存活失败，典型表现是在融合后24_{48小时镜检时就能看到大量细胞碎片，完整活细胞团非常少。这类结果往往提示问题出现在融合操作本身、亲本细胞状态或者PEG处理造成的急性损伤。第二类是**HAT筛选期集落消退**，也就是培养最初2}3天仍然能看到一定数量活细胞或小细胞团，但到第5~7天以后集落开始明显变稀甚至逐渐消失。这类情况更需要把注意力转向HAT选择压力、培养条件、铺板密度以及新融合细胞是否获得足够生长支持。

因此，建议从融合后24小时就开始保留显微镜记录，而不是只在最终筛选结束以后统计集落数。至少可以记录细胞碎片比例、疑似融合细胞团数量、不同孔之间的差异以及外圈孔和内圈孔表现。如果早期已经大量死亡，后面再调整HAT换液频率意义有限；如果前两天状态正常而后期才逐步消退，则说明至少有一部分细胞成功经历了融合，需要继续排查筛选和培养环境。

二、第一项排查：PEG融合效率和亲本细胞状态是否稳定

细胞融合本身就是低概率事件，而且对操作细节非常敏感。PEG的分子量、批次、加入速度、暴露时间、稀释过程、融合时总细胞数以及两类亲本细胞的实际活率都会影响最终结果。尤其是骨髓瘤细胞如果在融合当天已经处于过度汇合、长期静止或者传代状态不稳定，即使B细胞状态良好，最终可形成的有效杂交细胞数量也可能显著减少。

因此，不建议只通过第7天或者第10天的集落数量反推“融合率”。更加有用的做法，是在融合以后尽早统计总活细胞数和疑似融合细胞团，与实验室历史成功批次进行比较。如果同样的细胞数量和铺板方法下，这一次融合后24小时就出现明显更多碎片，那么问题更可能出现在融合操作本身，而不是后期HAT筛选。

为了提高重复性，可以尽量固定PEG批号、滴加速度和整个操作时间轴，并在融合前一天确认亲本细胞状态。骨髓瘤细胞应提前复苏和传代，使其在正式融合当天处于活跃对数生长期，而不是临时从长时间高密度培养体系中直接取用。真正值得标准化的是完整操作过程，而不只是记录“用了多少PEG”。

三、第二项排查：骨髓瘤细胞的HGPRT缺陷有没有发生变化

HAT筛选能够选择出杂交瘤细胞，核心基础是亲本骨髓瘤细胞具有HGPRT缺陷。HAT中的氨基蝶呤可以抑制二氢叶酸还原酶DHFR，进而阻断嘌呤和嘧啶的从头合成途径；细胞如果要继续合成DNA，就需要依赖次黄嘌呤和胸腺嘧啶脱氧核苷所支持的补救合成途径。正常B细胞具有相应补救途径，但本身不能长期无限增殖；HGPRT缺陷骨髓瘤细胞缺乏关键嘌呤补救能力，因此不能长期在HAT条件下生长；只有真正融合后的杂交细胞同时获得双方的关键特征，才能继续存活并形成集落。

如果骨髓瘤细胞长期连续传代且缺少相应选择压力，有可能出现HGPRT表型不稳定甚至回复细胞，使部分未融合骨髓瘤细胞也能够在HAT中持续生长。这时最终看到的“集落很多”并不一定代表融合成功，反而可能出现假集落并稀释真正阳性杂交瘤信号。

最直接的验证方式，是把待验证骨髓瘤细胞单独铺板并加入HAT培养基，连续观察10~14天。如果仍有细胞持续生长，就需要怀疑当前骨髓瘤细胞群的HGPRT缺陷状态已经不稳定。原稿中建议可根据实验室体系重新使用8-氮杂鸟嘌呤或6-硫代鸟嘌呤进行选择，并通过分级细胞库减少长期连续传代带来的漂移。

四、第三项排查：问题到底出在HAT本身，还是出在细胞

HAT培养基并不是“加进去以后能筛选就行”，其中不同组分的实际状态都会改变最终选择压力。氨基蝶呤浓度过高时，整体代谢压力可能过强，新融合、状态本就脆弱的杂交瘤细胞也可能一起死亡；次黄嘌呤本身溶解度相对有限，如果配制过程不充分，实际有效浓度与理论浓度之间可能存在偏差；筛选后期如果长期不换液，培养基营养消耗、代谢废物积累和渗透压变化也会进一步限制集落生长。

因此，遇到整板状态异常时，不宜直接更换全部亲本细胞重新做融合。一个更有信息量的验证方法，是使用实验室中已经确认能够稳定耐受HAT的成熟杂交瘤细胞，在当前待验证培养基中连续培养并绘制生长曲线。如果成熟杂交瘤在同一批HAT体系中同样生长异常，那么问题更可能来自培养基、配制或培养条件；如果成熟杂交瘤正常而新融合细胞全部死亡，则需要继续回到融合操作、新融合细胞状态和支持条件上排查。

五、第四项排查：铺板密度为什么过高和过低都可能失败

很多杂交瘤筛选实验容易只关注“每孔有没有细胞”，但新融合细胞对于局部细胞密度非常敏感。铺板过低时，单孔内有效细胞数量很少，细胞自身分泌的促生长因子和旁分泌支持会被过度稀释，单个杂交细胞更难跨过融合后的应激期；铺板过高时，又会形成明显的营养竞争和空间竞争，同样可能抑制健康集落形成。

96孔板还存在一个经常被忽略的边缘效应。外圈孔由于蒸发速度更快，培养液体积、渗透压和营养环境比中心孔更容易变化，因此同一批细胞可能出现外圈集落明显少于内圈的现象。

排查这一问题时，可以使用同一批融合细胞设置3个铺板密度梯度，并在第7天比较集落数量和孔间差异。同时分别统计边缘孔和中心孔。如果变化主要集中在外圈，就应优先改善培养箱湿度和板内蒸发控制，而不是直接调整HAT浓度。常见做法包括外圈仅加入无菌PBS或培养基、不用于正式细胞培养，或者直接只使用内圈孔进行关键比较。

六、第五项排查：饲养层是真的在帮助，还是引入了新的变量

腹腔巨噬细胞等饲养层常被用于为新融合杂交瘤提供细胞因子、代谢物和局部微环境支持，尤其在低密度或单细胞状态下，可以提高细胞存活和克隆形成概率。但饲养层本身同样存在批次和制备差异，不同动物来源、细胞状态、灭活程度以及铺板密度都会影响最终支持效果。

如果饲养层制备状态不理想，它也可能消耗营养、占据空间或增加实验背景。因此，当实验室长期依赖饲养层但结果波动很大时，最有价值的不是凭经验判断“这批饲养层可能不好”，而是设置“加饲养层、不加饲养层、加入化学成分限定生长补剂”三组平行实验，并保持杂交瘤铺板密度和其他条件完全一致。

如果结果显示饲养层并没有稳定增加集落形成，那么可以进一步考虑使用化学成分限定的生长补充体系，减少饲养层制备和动物来源带来的批次变量。对于需要进一步简化克隆步骤的体系，也可以根据实验目的评估甲基纤维素半固体培养，使单个克隆在物理空间上保持分离。

七、第六项排查：血清批次、谷氨酰胺和抗生素这些“小变量”可能影响很大

胎牛血清属于复杂生物来源材料，即使不同批次都通过常规质量检测，具体蛋白、生长因子和其他成分仍然可能存在差异。对于成熟、适应性较强的细胞，这些差异有时影响有限，但新融合杂交瘤本身处于高应激和低密度状态，因此更容易受到培养基和血清变化影响。

如果某一次实验唯一变化就是新换了一批血清，而其他流程都和历史成功批次相同，可以直接使用同一批冻存细胞平行比较两个血清批次，这比重新做整套融合更容易判断问题来源。新血清在正式用于关键融合前，也可以先通过小规模杂交瘤或克隆形成实验验证。

此外，谷氨酰胺在37℃培养条件下会逐渐降解，因此需要注意储存和添加方式；抗生素也不适合为了“更保险”而随意提高浓度，因为新融合细胞对额外环境压力更加敏感。很多时候实验失败不是某一个变量极端异常，而是多个看起来很小的偏差累积到一起。

八、第七项排查：操作参数为什么常常是最容易被忽略的原因

杂交瘤实验涉及离心、PEG处理、重悬、铺板、换液和长期培养等多个步骤，每个单独偏差看起来都不严重，但累积以后足以明显降低细胞存活。例如离心转速偏高或时间过长，可能增加融合后细胞损伤；PEG稀释和重悬时吹打过猛，会增加机械应激；培养箱温度、湿度或CO₂波动，以及频繁开门带来的温度变化，也可能逐步反映到本就脆弱的新融合细胞上。

因此，在排查“这次为什么突然失败”时，实验记录的价值非常大。可以直接把当前失败批次和历史成功批次的离心、PEG、细胞数、铺板量、换液和培养箱参数逐项对照，而不是只比较试剂名称。对于离心、过滤和接种这些容易出现人为差异的步骤，还可以安排平行重复。

这类问题最终往往不需要更换昂贵试剂，真正有效的解决方式反而是把关键操作写入SOP，并留下足够详细的过程记录。

九、什么时候才应该考虑增加杂交瘤生长支持

如果融合、HGPRT、HAT培养基、铺板密度、饲养层、血清和操作等问题都已经经过排查，却仍然表现为新融合细胞生长慢、低密度存活差或集落数量偏少，那么才更适合进一步考虑增加筛选阶段的细胞生长支持。

这里需要区分两个不同问题。HAT筛选压力解决的是“哪些细胞能够在选择条件下继续存活”，而低密度单细胞增殖能力解决的是“已经具备生存资格的杂交细胞能否真正长成可见集落”。前者属于选择机制，后者属于细胞生长支持，两者不能互相替代。

促杂交瘤细胞生长剂可用于为新融合杂交瘤和低密度细胞提供增殖相关营养与信号支持。公开资料显示其无动物来源成分、无血清蛋白，可与DMEM、RPMI-1640等基础培养基及HAT筛选体系配合使用，并适用于NS-1、SP2/0等常见小鼠骨髓瘤融合体系。

更合理的使用逻辑依然是先排查、后优化。如果真正的问题是PEG操作严重失误或者HAT浓度异常，增加任何生长补剂都无法从根本上解决问题；只有在基础流程已经稳定以后，生长支持才更适合用于改善低密度存活和克隆形成。

十、整板无细胞、集落少但阳性率高，分别应该怎么判断

如果HAT筛选以后整块板完全没有任何可见存活集落，原板通常已经缺少可以继续扩增的细胞来源，这时与其反复尝试“救板”，更有效的是先用小规模平行实验确认融合和培养体系稳定，再重新进行正式融合。

如果情况是集落数量偏少，但已有集落中的阳性率很高，那么结论完全不同。这往往说明选择体系本身具有一定有效性，主要问题可能是有效存活细胞数量不足，而不是HAT没有正常工作。此时可以优先优化铺板密度和生长支持，并尽快将已经获得的阳性克隆冻存建库，避免在后续扩增中丢失。

十一、HAT和生长补剂能不能同时使用

如果生长补剂本身与HAT及基础培养体系不存在成分冲突，那么可以根据实际体系同时使用。其逻辑并不是让生长补剂降低HAT选择压力，而是在选择条件存在的同时，为真正成功融合的杂交细胞增加存活和增殖支持。

因此，在设计验证实验时，最好同时保留对照组。例如HAT基础条件、HAT+饲养层、HAT+化学成分限定补剂，在相同细胞和铺板密度下比较集落数、存活时间和克隆形成效率，才能判断生长支持是否真正改善了当前体系。

十二、总结

杂交瘤HAT筛选以后集落生长不良并不是一个单一问题。融合后24-48小时大量死亡时，应优先回到PEG操作和亲本细胞状态；前2-3天仍有活细胞、到第5~7天逐渐消退时，则更需要排查HAT选择压力、培养基、铺板密度以及低密度生长支持。

真正高效的排查顺序是：先判断失败时间点，再逐项验证融合效率、HGPRT缺陷、HAT培养基、铺板密度、饲养层、血清/培养基以及操作参数，最后再考虑额外生长支持。

这样做的价值不仅是提高一次融合实验成功率，更重要的是逐渐把杂交瘤制备从“依赖经验”转变成能够记录、验证和复现的实验流程。

关于技术来源

本文基于公开实验经验及杂交瘤HAT筛选相关技术资料，曼博生物MineBio整理，用于科研信息分享、实验参考和杂交瘤筛选故障排查。Hybriboost促杂交瘤细胞生长剂可用于科研场景中的新融合细胞和低密度克隆生长支持。杂交瘤筛选结果仍会受到亲本细胞状态、PEG操作、HAT培养基、铺板密度、血清批次和培养环境等多项因素影响，实际应用前应结合自身体系进行平行对照和预实验验证。